Expresión de marcadores embrionarios en células mesenquimales de pterygium

  1. G. Pascual
  2. M.A. Montes
  3. C. Pérez-Rico
  4. B. Pérez-Kohler
  5. J.M. Bellón
  6. J. Buján
Revue:
Archivos de la Sociedad Española de Oftalmologia

ISSN: 0365-6691

Année de publication: 2010

Volumen: 85

Número: 12

Pages: 400-404

Type: Article

DOI: 10.1016/J.OFTAL.2010.11.016 DIALNET GOOGLE SCHOLAR lock_openAccès ouvert editor

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Résumé

Propósito: La destrucción de la barrera del epitelio limbal es el mecanismo más importante en la formación del pterygium. Se piensa que proviene de la activación y proliferación de células madre (stem cells) del epitelio limbal. El objetivo de este estudio ha sido determinar la presencia de células mesenquimáticas indiferenciadas (stem cells) en cultivos celulares obtenidos de pterygium humano. Métodos: Las células de 6 pterygium humanos fueron aisladas mediante explantos y cultivadas en amniomax. Al alcanzar la confluencia, las células fueron sembradas en microplacas de 24 pocillos. Los cultivos celulares fueron estudiados en el 2.º subcultivo. Se analizó mediante inmunofluorescencia la expresión de los marcadores de células madre embrionarias, OCT3/4 y CD9. Los diferentes fenotipos celulares fueron caracterizados con los anticuerpos monoclonales anti-CD31, α-actina y vimentina. Resultados: Toda la población celular obtenida de pterygium mostró expresión para vimentina. Menos de un 1% de las células presentaron expresión para los marcadores CD31 y α-actina. La mayor parte de la población celular fue positiva para los marcadores embrionarios OCT3/4 y CD9. Conclusión: La población celular expandida a partir de pterygium está compuesta por células de fenotipo mesenquimal, que muestran expresión de marcadores embrionarios OCT3/4 y CD9. Esta población, con un alto grado de indiferenciación, podría ser responsable de la alta tasa de recurrencia del pterygium tras su extirpación quirúrgica.

Références bibliographiques

  • Jaros, P.A., DeLuise, V.P.. (1988). Pinguecula and pterygia. Surv Ophthalmol.. 33. 41
  • Hill, J.C., Maske, R. (1989). Pathogenesis of pterygium. Eye.. 3. 218
  • Cameron, M.E.. (1983). Histology of pterygium: an electron microscopic study. Br J Opthalmol.. 67. 604
  • Tsai, Y.Y., Cheng, Y.W., Lee, H., Tsai, F.J., Tseng, S.H., Lin, C.L.. (2005). Oxidative damage in pterygium. Mol Vis.. 11. 71
  • Shimmura, S., Ishioka, M., Hanada, K., Shimazaki, J., Tsubota, K. (2000). Telomerasa activity and p53 expression in pterygia. Invest Ophtahlmol Vis Sci.. 41. 1364
  • Dushku, N., John, M.K., Shultz, G.S., Reid, T.W.. (2001). Pterygia pathogenesis: corneal invasion by matrix metalloproteinase expressing altered limbal epithelial basal cells. Arch Ophthalmol.. 119. 695-706
  • Van Setten, G., Aspiotis, M., Blalock, T.D., Grotendorst, G., Schultz, G. (2003). Connective tissue growth factor in pterygium: simultaneous presence with vascular endothelial growth factor, possible contributing factor to conjunctival scarring. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol.. 241. 135
  • Solomon, A., Grueterich, M., Li, D.Q., Meller, D., Lee, S.B., Tseng, S.C.. (2003). Overexpression of insuline-like growth factor-binding protein-2 in pterygium body fibroblasts. Invest Ophthalmol Vis Sci.. 44. 573
  • Marcovich, A.L., Morad, Y., Sandbank, J., Huszar, M., Rosner, M., Pollack, A.. (2002). Angiogenesis in pterygium: morphometric and immunohistochemical study. Curr Eye Res.. 25. 17-22
  • Lee, D.H., Cho, H.J., Kim, J.T., Choi, J.S., Joo, C.K.. (2001). Expression of vascular endothelial growth factor and inducible nitric oxide synthase in pterygia. Cornea.. 20. 738
  • Austin, P., Jakobiec, F.A., Iwamoto, T. (1983). Elastodysplasia and elastodystrophy as the pathogenic bases of ocular pterygia and pinguecula. Ophthalmology.. 90. 96-109
  • Tan, D., Chee, S.P., Dear, K., Lim, A.S.. (1997). Effect of pterygium morphology on pterygium recurrence in a controlled trial comparing conjuntival autografting with bare sclera excision. Arch Ophthalmol.. 115. 1235
  • Touhami, A., Di Pascuale, M.A., Kawatika, T., Del Valle, M., Rosa, R.H., Dubovy, S.. (2005). Characterisation of myofibroblasts in fibrovascular tissue of primary and recurrent pterygia. Br J Ophthalmol.. 89. 269
  • Dushku, N., Reid, T.W.. (1994). Immunohistochemical evidence that human pterygia originate from an invasión of vimentin-expressing altered limbal epithelial basal cells. Curr Eye Res.. 13. 473
  • Chen, Y.T., Tseng, S.H., Tsai, Y.Y., Huang, F.C., Tseng, S.Y.. (2009). Distribution of vimentin-expressing cells in pterygium: an immunocytochemical study of impression cytology specimens. Cornea.. 28. 547
  • Niwa, H., Miyazaki, J., Smith, A.G.. (2000). Quantitative expression of Oct-3/4 defines differentiation, dedifferentiation or self-renewal of ES cells. Nat Genet.. 24. 372
  • Aoyama, K., Oritani, K., Yokota, T., Ishikawa, J., Nishiura, T., Miyake, K.. (1999). Stromal cell CD9 regulates differentiation of hematopoietic stem/progenitor cells. Blood.. 93. 2586
  • Ye, J., Song, Y.S., Kang, S.H., Yao, K., Kim, J.C.. (2004). Involvement of bone marrow-derived stem and progenitor cells in the pathogenesis of pterygium. Eye.. 18. 839
  • Song, Y.S., Ryu, Y.H., Choi, S.R., Kim, J.C.. (2005). The involvement of adult stem cells originated from bone marrow in the pathogenesis of pterygia. Yonsei Med J.. 46. 687
  • Lee, J.K., Song, Y.S., Ha, H.S., Park, J.H., Kim, M.K., Park, A.J.. (2007). Endothelial progenitor cells in pterygium pathogenesis. Eye.. 21. 1186
  • Lee, J.K., Kim, J.C.. (2007). Progenitor cells in healing after pterygium excision. Yonsei Med J.. 48. 48-54
La source de données: Dialnet